熱線(xiàn):021-56056830,66110819
手機:13564362870
熱線(xiàn):021-56056830,66110819
手機:13564362870
摘要:植物在遭遇鹽堿、干旱、重金屬、低溫、酸、機械刺激等非生物脅迫時(shí),細胞膜電化學(xué)特性的變化和調節往往是最早發(fā)生的植物細胞反應之一,并與細胞內的生理代謝活動(dòng)之間存在復雜的聯(lián)系?;诖?,在過(guò)去的30年間,微電極離子流技術(shù)以其非損傷性、實(shí)時(shí)性、靈敏性和高分辨率等特有的技術(shù)優(yōu)勢,成為了研究逆境脅迫條件下植物的生理響應及調節機制常用的技術(shù)手段。從跟蹤監測界面反應、解析基因功能、進(jìn)行抗逆育種和研究信號物質(zhì)等方面綜述該技術(shù)在植物逆境脅迫生理研究中的應用,旨在為研究植物功能基因組學(xué)和調節植物對環(huán)境的適應性提供參考。
關(guān)鍵詞:微電極離子流技術(shù);逆境脅迫;離子流;活體;基因功能
中圖分類(lèi)號:Q945.78;Q-3文獻標志碼:A
文章編號:1002-1302(2021)01-0043-06
作者簡(jiǎn)介:趙怡琳(1998—),女,江蘇常州人,碩士研究生,主要從事植物逆境生理研究。E-mail:1324822006 qq.com。
通信作者:汪曉麗,博士,副教授,主要從事植物營(yíng)養電生理研究。E-mail:xlwang yzu.edu.cn。
非損傷微測技術(shù)(non-invasivemicro-testtechnique,NMT),別稱(chēng)微電極離子流檢測(microelectrodeionfluxestimation,MIFE),最早由神經(jīng)科學(xué)家Jaffe于1974年提出原初概念[1],如今開(kāi)始廣泛應用于動(dòng)植物科學(xué)、微生物學(xué)、神經(jīng)科學(xué)、醫學(xué)生理學(xué)、分子遺傳學(xué)等生物學(xué)領(lǐng)域,是近年來(lái)發(fā)展起來(lái)的可進(jìn)行生理特征、生理功能動(dòng)態(tài)測量的研究新手段[2]。在植物抗逆方面,NMT以其特有的優(yōu)勢被眾多研究者用于干旱、高溫、低溫、鹽漬、重金屬、病原菌等非生物脅迫和生物脅迫的研究中[2]。研究受逆境脅迫后植物組織或細胞表面附近的離子流變化,對于揭示植物在遭遇逆境時(shí)的物質(zhì)跨膜轉運特征、生理響應機制和調節機制都具有重要意義。
1、非損傷微測技術(shù)的原理和特點(diǎn)
當細胞或組織不論以主動(dòng)還是被動(dòng)方式吸收離子和分子時(shí),樣品表面的離子或分子濃度會(huì )發(fā)生變化,與環(huán)境濃度形成濃度差,從而產(chǎn)生電化學(xué)勢梯度。非損傷微測技術(shù)通過(guò)離子/分子選擇性微電極技術(shù),玻璃電極在臨近樣品表面的一段微小的距離內來(lái)回移動(dòng),同時(shí)測量電化學(xué)勢梯度,通過(guò)Nernst方程得到該距離內的離子或分子濃度差,并通過(guò)Fick第一擴散定律計算出流速,流速的正負符號反映了離子流或分子流移動(dòng)的方向[3]。
NMT具有活體、實(shí)時(shí)、動(dòng)態(tài)、直觀(guān)的優(yōu)點(diǎn),并可以長(cháng)時(shí)間多維度地進(jìn)行離子/分子流測量與掃描[3]。該技術(shù)可用于各種生物組織或細胞的研究,可單獨或同時(shí)測量H+、Ca2+、K+、NH+4、Cd2+、NO-3、O2、H2O2等離子/分子,為生物學(xué)研究提供了良好的試驗系統平臺[4]。相比于傳統的微電極技術(shù),其優(yōu)勢在于高靈敏度,兩者相差約6個(gè)數量級,而且在研究植物生理生態(tài)學(xué)過(guò)程中不須要破壞組織或細胞,能直接進(jìn)行活體測定,可以實(shí)時(shí)反映進(jìn)出植物體組織或細胞的離子/分子的動(dòng)態(tài)變化規律。
2、非損傷技術(shù)在植物抗逆中的應用
2.1、界面反應
植物在遭遇逆境時(shí)會(huì )有一系列的生理生化反應,從而表現出各種特有的響應和調節機制。細胞膜透性和功能的改變是植物對逆境條件最為直接和快速的響應[4],進(jìn)而才是在細胞器或細胞質(zhì)中進(jìn)行的同化、代謝等生理過(guò)程。因此,從逆境條件下植物與外界環(huán)境之間的界面反應著(zhù)眼,探索界面上特征離子或關(guān)鍵離子的流動(dòng)速度和方向變化,對研究植物的逆境生理具有極為重要的意義。研究者們已對鹽漬、干旱、重金屬的脅迫方面進(jìn)行了廣泛的研究,所采用的生物材料、特征離子和測定部位等列于表1。
Sa等研究了楊樹(shù)在鹽脅迫下根表NO-3和H+的凈通量,非定植根表現出較強的凈NO-3外排,而真菌定植通過(guò)降低細胞膜表面pH值和抑制H+-ATP酶活性,阻止了NO-3的損失[5]。Tang等采用NMT研究了不同NaCl濃度下小果白刺(NitrariasibiricaPall.)根幼苗分生組織中Na+、K+和H+的流速,NaCl處理后,根系穩定的K+流出量逐漸減小,并顯著(zhù)增加了H+的流入[6]。Tang等研究了云杉根尖NH+4和NO-3的流速,在距離根尖13~15mm和8.0~10.5mm處檢測到NH+4和NO-3的最大凈流量,NH+4對云杉根尖吸收NO-3內流表現出明顯的抑制作用[7]。Chen等采用NMT測定大麥根部K+和Na+的流速,發(fā)現具有耐鹽性的大麥H+泵活性較高,膜電位較低,使根細胞更容易將Na+從細胞質(zhì)泵入外培養基[8]。Huang等對三葉柑桔根系H2O2流速進(jìn)行研究,發(fā)現菌根使主根和側根的H2O2外排量增加,從而減輕宿主植物干旱脅迫的氧化損傷[9]。Huang等使用NMT研究發(fā)現,湖北海棠(MalushupehensisRehd.)細根表面NO-3凈流入量下降,NH+4凈流入量明顯增加,說(shuō)明NH+4在提高海棠耐旱性方面可能發(fā)揮著(zhù)更重要的作用。在干旱脅迫下,2種銨轉運體(AMT4;2和AMT4;3)均顯著(zhù)上調,而大多數與硝酸鹽吸收、還原和氮代謝相關(guān)的基因均下調。在正常氮水平下,5%聚乙二醇處理植株的生物量產(chǎn)量、根系生長(cháng)和氮素吸收/減少值均高于低氮處理植株。這些結果表明,干旱脅迫對湖北海棠的不利影響可能隨著(zhù)氮素的增加而減輕[10]。Zhang等的研究結果表明,利用聚乙二醇(PEG)模擬的干旱條件下,棉花NO-3通量由凈流入變?yōu)閮袅鞒?,在距根?.3cm處有1個(gè)明顯的峰值[11]。對照條件下,檉柳(Tamarixramosissima)距根尖0.3cm處未觀(guān)察到明顯的NO-3流入信號,而PEG處理顯著(zhù)增強了檉柳距根尖0.3cm處NO-3的流入。Lv等首次制備了一種同時(shí)測定3種離子的氮化碳超靈敏微電極,用于測定水稻根表面不同位點(diǎn)Cu2+、Pb2+、Hg2+的流速[12]。Wu等研究了不同NO-3/NH+4比值對水稻根系吸收鎘(Cd)、木質(zhì)部轉位以及隨后Cd積累的生理和遺傳機制,結果表明,隨著(zhù)NH+4-N比例的增加,根毛區凈Cd2+流量受到抑制[13]。此外,2種劑量Cd處理下,木質(zhì)部汁液中Cd濃度也呈現出隨NH+4-N比值增加而下降的趨勢。增加銨態(tài)氮營(yíng)養有助于抑制水稻對Cd的吸收、木質(zhì)部運輸和隨后的積累。
2.2、解析基因功能
隨著(zhù)轉基因技術(shù)的發(fā)展,從植物的分子機制研究其抗逆機制也更為普遍。從分子學(xué)角度,植物抵御逆境是基因調控的結果。植物遭遇逆境時(shí),通過(guò)啟動(dòng)或關(guān)閉某些相關(guān)基因,改變生理代謝活動(dòng)使植物適應逆境[13]。通過(guò)基因工程,將可能具有抗性的基因組導入擬南芥等模式植物中,研究基因組對植物抗逆的作用和機制?;蚪M學(xué)方法可以全面研究抗逆基因的功能和表達調控,并且把模式植物的抗逆信息推廣到基因組復雜的農作物上去[14]。同時(shí)可以克隆抗逆基因,在沒(méi)有抗性的植物中通過(guò)基因工程手段導入,改良作物的抗逆性[15]。
NMT在研究植物抗逆基因中的應用見(jiàn)表2。Fan等將海馬齒(Sesuviumportulacastrum)的SpAHA1基因轉錄入擬南芥中,使用NMT測定質(zhì)膜中Na+、H+和K+的流速,結果顯示,SpAHA1蛋白在胞質(zhì)膜上具有H+-ATPase的功能,SpAHA1蛋白通過(guò)增加質(zhì)子的電化學(xué)梯度來(lái)降低Na+的積累,促進(jìn)質(zhì)膜上Na+/H+反向運輸體的交換活性,在植物抵抗鹽堿逆境中起著(zhù)十分重要的作用[16]。擬南芥CYSTM3在耐鹽脅迫方面起著(zhù)負調控作用是Xu等運用NMT發(fā)現的,CYSTM3基因可以抑制擬南芥根系Na+外排,抑制一系列活性氧清除酶的活性[17]。Zhang等同樣研究了轉基因擬南芥,來(lái)自胡楊的PeJRL基因在NaCl脅迫下轉基因植株保留了K+,限制了Na+的積累[18]。PeJRL轉基因株系增加了Na+的外排量,這與編碼細胞膜SOS1、AHA1和AHA2基因的上調有關(guān)。PeJRL過(guò)表達植物中活化的H+-ATPases抑制了由NaCl誘導的去極化激活的K+通道介導的損失。此外,Cd2+借用Cu2+通道、Cu2+激活Ca2+通道等,均是Cd2+吸收增加的潛在機制。Zhang等的研究表明,MhMAPK4基因過(guò)表達降低了煙草根中Cd2+的凈流入量,轉基因煙草中Cd2+流入到穩定狀態(tài)的恢復時(shí)間也比野生型煙草短,MhMAPK4過(guò)表達降低了煙草根細胞的死亡和凋亡,MhMAPK4通過(guò)調節根對Cd2+的吸收來(lái)調節Cd的積累,通過(guò)調節液泡加工酶(VPE)的活性來(lái)控制Cd引起的細胞死亡[19]。Ma等鑒定了粳稻抗寒性的數量性狀位點(diǎn)為COLD。過(guò)表達COLD1基因可顯著(zhù)提高水稻的抗寒性,而缺乏或低表達COLD1基因的水稻對寒冷敏感。COLD1編碼定位于細胞膜,是內質(zhì)網(wǎng)的G蛋白信號調節因子。它與G蛋白相互作用,激活Ca2+通道感知低溫,加速G蛋白GTPase活性,使水稻具有抗寒性[20]。Zhou等使用NMT分析顯示,轉基因擬南芥根在冷沖擊下Ca2+內流增加。在冷脅迫下,胞質(zhì)Ca2+作為信號分子的增加激活了下游COR基因的表達。因此,Ca2+的流入可能導致轉基因擬南芥COR基因表達增加[21]。
2.3、抗逆育種
傳統方法篩選具有抗性的植物品種較為耗時(shí)費力。非損傷微測技術(shù)的活體動(dòng)態(tài)測量,使試驗周期縮短,能較為快速地進(jìn)行選種育種。由于不同品種的植物在逆境下的生理生化反應不同,所表現出的離子流特征也各有不同。將具有耐性的品種與沒(méi)有耐性的品種作對比試驗,了解其抗逆機制,總結具有耐性品種的離子流特征,建立抗性辨識模型。通過(guò)測定植物組織或器官具有特征性的一種或多種離子/分子流,來(lái)判斷該植物是否具有抗性,從而進(jìn)行抗逆育種。
Liu等對馬鈴薯二倍體和六倍體根系K+、H+、Ca2+和Na+的凈通量進(jìn)行研究,結果表明在鹽脅迫下,在根和葉組織中六倍體比二倍體保留更多的K+,積累更少的Na+。六倍體由于質(zhì)膜Ca2+通道對H2O2的高敏感性,有效地將Na+區隔在伸長(cháng)和成熟根區[22]。Chen等為進(jìn)一步了解大麥耐鹽性性狀的遺傳行為,在6個(gè)大麥品種間進(jìn)行半雙列雜交,以已知耐鹽性品種為對照,研究在鹽脅迫條件下植物根系K+損失為基礎的耐鹽性配合力。耐鹽品種CM72和Numar表現出較高的一般配合力(GCA),有較高的耐鹽性(在鹽脅迫下K+損失量較?。23]。毛桂蓮等研究灌木葉片凈Na+、K+和Ca2+流速,發(fā)現在NaHCO3脅迫下,3種灌木通過(guò)不同的策略來(lái)消除Na+毒害。寧夏枸杞葉片通過(guò)將Na+外排來(lái)降低鈉毒害,而2種濱藜是將Na+區隔化,在葉表皮形成鹽腺[24]。Zhang等測定茶樹(shù)葉片K+流速,模擬干旱脅迫誘導的茶葉細胞中K+外排與12個(gè)茶樹(shù)品種的整體耐旱性呈較強的負相關(guān)。與此相一致的是,耐旱品種葉片K+的殘留量明顯高于敏感品種。外源施用K+顯著(zhù)減輕了茶樹(shù)的干旱誘導癥狀,說(shuō)明K+的保留是茶樹(shù)耐旱機制的重要組成部分。藥理試驗結果表明,耐干旱和敏感茶樹(shù)品種間,K+向外整流通道和非選擇性陽(yáng)離子通道對PEG誘導的葉肉細胞K+外排的控制作用是不同的[25]。
2.4、信號物質(zhì)
植物感受脅迫信號,Ca2+在信號傳遞過(guò)程中發(fā)揮不可缺少的作用。Ca2+調節植物對環(huán)境脅迫的反應,在脅迫條件下,胞內Ca2+常常顯著(zhù)增加,可以啟動(dòng)相關(guān)基因激活一系列生化反應,使植物能夠適應環(huán)境脅迫[26]。Ca2+還能誘導相關(guān)蛋白合成,激活酶活性,參與活性氧的產(chǎn)生,使植物抗性增強[26]。使用非損傷微測技術(shù)檢測Ca2+流,能較為方便直觀(guān)地觀(guān)察到逆境下Ca2+流速和方向的變化,可以進(jìn)一步研究Ca2+流對其他離子/分子流的影響,探究鈣信使在植物抗逆過(guò)程中起的作用。
Lang等通過(guò)研究甘草(Glycyrrhizauralensis)根部Na+和K+流速發(fā)現,鹽脅迫會(huì )提高在調節K+/Na+平衡中起信號分子作用的Ca2+、H2O2、NO、胞外ATP水平,促進(jìn)Na+的外流,抑制K+的損失[27]。Chao等研究了鈾脅迫下鬼臼菌根(Syngoniumpodophyllum)根部Ca2+流速,結果表明,黑曲霉能抑制根細胞的鈣外排,從而減弱了鈾對植物生長(cháng)的毒害作用[28]。在干旱脅迫下,H2S介導離子通量誘導擬南芥氣孔關(guān)閉是Jin等通過(guò)測定擬南芥葉片H+、Ca2+、K+和Cl-流速發(fā)現的,此外還發(fā)現內源性H2S在不影響H+流量的情況下,可誘導跨膜K+流出以及Ca2+、Cl-流入[29]。Rodrigo-Moreno等研究了銅脅迫下不同擬南芥根部的離子轉運情況,發(fā)現低濃度的Cu2+刺激根尖Ca2+內流,但未刺激成熟區,銅誘導K+外排并且在銅暴露后,根尖的基礎過(guò)氧化積累有所減少。銅會(huì )在胞質(zhì)中產(chǎn)生羥自由基,從而調控細胞膜羥自由基敏感性的Ca2+和K+轉運系統[30]。
3、離子流與植物抗逆的聯(lián)系
在逆境中植物往往會(huì )受到滲透脅迫、離子失調、膜透性改變、生理代謝紊亂等危害,植物對逆境的生理方面的適應變化包括改變生物膜透性、形成逆境蛋白、產(chǎn)生抗氧化防御系統、進(jìn)行滲透調節等[31],其中滲透調節物質(zhì)包括細胞與外界進(jìn)行無(wú)機離子交換,如K+、Na+[31];細胞內合成有機物質(zhì),如脯氨酸、甜菜堿等[31]。因此在植物抗逆生理過(guò)程中進(jìn)行滲透調節會(huì )伴隨著(zhù)H+、Ca2+、K+、Cl-、Na+、H2O2等離子/分子流入或流出植物液泡或細胞。非損傷微測技術(shù)的試驗結果直接反映的是離子流速,從吸收或外排的離子動(dòng)態(tài)變化角度可以體現植物細胞的滲透調節,表現出植物的抗逆能力。
植物抵抗鹽堿脅迫,可以通過(guò)細胞質(zhì)膜上的H+-ATP酶將H+泵到胞外,形成跨膜的H+濃度梯度從而驅動(dòng)Na+/H+反向運輸體將細胞內的Na+排出,同時(shí)也抑制了K+外流。Chen等對具有較強耐鹽堿脅迫能力的壇紫菜進(jìn)行了研究,結果表明,與對照海草相比,壇紫菜具有較高的K+/Na+比值。壇紫菜通過(guò)Na+/H+反載體將Na+外排,同時(shí)降低了海鹽藻脫極化激活通道K+的損失,在鹽脅迫下維持Na+/H+的穩態(tài),使壇紫菜具有抗高鹽脅迫能力[32]。Ca2+在植物干旱脅迫中,是植物細胞內重要的調節生理功能的信號物質(zhì)。郎濤等研究發(fā)現,胞外ATP、H2O2、Ca2+、NO等鹽脅迫信號是通過(guò)上調紅樹(shù)根系細胞質(zhì)膜Na+/H+逆向轉運體系活性,在促進(jìn)Na+和H+逆向跨膜轉運的同時(shí),抑制K+外流[33]。
植物抵抗干旱脅迫主要通過(guò)細胞進(jìn)行滲透調節來(lái)保持吸水能力[34],在根尖細胞的無(wú)機滲透調節物質(zhì),如K+、Cl-能保持滲透壓力和水分梯度,有利于細胞在干旱下維持水分。植物葉片的氣孔開(kāi)閉也與K+密切相關(guān),保衛細胞中K+外排使水勢上升,氣孔關(guān)閉,減少植物蒸騰作用。Mak等研究發(fā)現,PEG誘導的短期離子通量響應不同于植物在長(cháng)期真實(shí)干旱條件下的離子通量,長(cháng)期干旱導致H+流入量更小,K+和Ca2+的流出量更大[35]。聚乙二醇誘導的干旱和實(shí)際干旱條件在調節這些化學(xué)信號和膜傳輸系統方面可能是不同的。在PEG短期誘導的大豆基因表達和蛋白質(zhì)組學(xué)研究中,沒(méi)有發(fā)現負責K+、H+和Ca2+通量的轉運體發(fā)生變化,說(shuō)明短期脅迫時(shí)離子的流入流出是植物的應激反應。
植物對重金屬的排斥包括分泌化合物降低有效性、回避攝入、限制運輸和排出體外[36],研究者們通過(guò)NMT研究植物對重金屬的吸收機制。Ma等研究發(fā)現,有硅培養的細胞與無(wú)硅培養的細胞相比,凈Cd2+內流顯著(zhù)減少[37]。因為細胞壁中64%的硅在細胞壁分離后與半纖維素成分結合,從而抑制了鎘的吸收。有硅培養的細胞壁表面電位的異質(zhì)性高于無(wú)硅培養的細胞壁表面電位的異質(zhì)性,且在添加鎘后均質(zhì)化。
4、問(wèn)題與展望
由于全球氣候變化加劇,鹽堿化、干旱、洪澇、低溫、高溫等環(huán)境問(wèn)題愈發(fā)嚴重,對植物的生存生長(cháng)不利。多數植物通過(guò)調節自身生理機能對逆境有不同的抵抗機制,在生理調節過(guò)程中往往伴隨著(zhù)H+、Ca2+、K+、Cl-、Na+、H2O2等離子/分子流入或流出植物體的過(guò)程,通過(guò)NMT進(jìn)行離子/分子流的研究能夠從全新角度闡述植物的抗逆機制,獲得常規方法難以獲得的全新發(fā)現[4]。NMT直接在根、葉片細胞等活體植物樣品上,在不損傷細胞膜的情況下獲得離子/分子流速,不僅能夠研究植物抵抗逆境的生理生化反應、微觀(guān)上基因調控的機制,還能夠通過(guò)對植物耐性機制的研究,篩選具備優(yōu)良性狀的生物品種。但非損傷微測技術(shù)在植物抗性研究方面也存在不足,多數植物都具有抵抗逆境的能力,所能獲得的植物材料有很多,檢測的離子或分子也多種多樣,不同的離子/分子流速在不同的植物材料中有不同的變化趨勢,但建立抗性辨識模型的比較少,沒(méi)有具體的評價(jià)指標。目前的研究大多僅是單方面采用NMT在植物某一生長(cháng)時(shí)期進(jìn)行離子或分子流速的測定,而研究植物的長(cháng)期演化過(guò)程是動(dòng)態(tài)連續的,各要素間存在復雜的互作關(guān)系,須要將NMT應用于植物整個(gè)生命周期的不同發(fā)育階段的研究中[4]。
非損傷微測技術(shù)在理論研究和試驗實(shí)踐中,研究不斷深入,探測范圍不斷擴大,技術(shù)不斷完善,非損傷微測技術(shù)必將更準確、更全面地揭示植物體離子跨膜運動(dòng)與植物生理功能之間的關(guān)系[2]。關(guān)于非損傷微測技術(shù)本身的改進(jìn),可以增加可檢測的離子/分子種類(lèi),探究植物體生命活動(dòng)規律中不同離子/分子所起的作用,發(fā)現更多植物特定的離子/分子流速的變化趨勢,形成特征性圖譜。隨著(zhù)可檢測的離子/分子種類(lèi)增多,非損傷微測技術(shù)須加快技術(shù)革新,每次單一測定一種離子/分子已經(jīng)不能滿(mǎn)足要求,須要發(fā)展多通道離子檢測技術(shù),更便捷地同時(shí)測定多種離子/分子,有效發(fā)揮實(shí)時(shí)、活體測定離子/分子的優(yōu)勢。對于該技術(shù)的應用技巧方面,完整活體植株固定在操作平臺上測定時(shí)根系易晃動(dòng),使用濾紙和小瓷片壓住樣品根系;植物材料相同品種間根系活力差異較大,在準備樣品時(shí)選擇較為強盛的根系,并多做平行試驗;儀器反應太靈敏,容易產(chǎn)生基線(xiàn)漂移,須在測定同種離子流不同品種時(shí)進(jìn)行多次校準;試驗環(huán)境要求較高,由于樣品容易晃動(dòng),數據容易受環(huán)境影響而產(chǎn)生波動(dòng)。還須進(jìn)一步改進(jìn)試驗條件。非損傷微測技術(shù)也應與其他先進(jìn)檢測技術(shù)結合研究,如熒光顯微、分子生物學(xué)、微域分析等,從不同層次不同角度全方位揭示植物的生理生化過(guò)程,逐步完善植物長(cháng)期演化過(guò)程的應用研究體系。拓展非損傷微測技術(shù)的應用領(lǐng)域需要豐富樣品的品種、類(lèi)型以及不同的測試部位,如微管形成層、木質(zhì)部等。同時(shí)新的逆境條件出現在不斷出現,如納米物質(zhì)、病蟲(chóng)害等,了解植物在新逆境條件下的適應性與植物的生理生化機制,從而推廣非損傷微測技術(shù)在植物抗逆以及各領(lǐng)域研究中的應用。
參考文獻:
[1]JaffeLF,NuccitelliR.Anultrasensiticevibratingprobeformeasuringsteadyextracellularcurrents[J].JournalofCellBiology,1974,63(2):614-628.
[2]劉科,張丙林,張文英,等.非損傷離子流檢測技術(shù)在作物逆境研究中的應用[J].應用生態(tài)學(xué)報,2018,29(2):678-686.
[3]李靜,韓慶慶,段麗婕,等.非損傷微測技術(shù)在植物生理學(xué)研究中的應用及進(jìn)展[J].植物生理學(xué)報,2014,50(10):1445-1452.
[4]賈代東,劉愛(ài)琴,李惠通,等.非損傷微測技術(shù)在植物生理生態(tài)學(xué)研究中的應用進(jìn)展[J].應用與環(huán)境生物學(xué)報,2017,23(1):175-182.
[5]SaG,YaoJ,DengC,etal.AmeliorationofnitrateuptakeundersaltstressbyectomycorrhizawithandwithoutaHartignet[J].NewPhytol,2019,222(4):1951-1964.
[6]TangX,YangX,LiH,etal.MaintenanceofK+/Na+balanceintherootsofNitrariasibiricaPall.inresponsetoNaClstress[J].Forests,2018,9(10):601.
[7]TangB,YinCY,LiuQ.CharacteristicsofammoniumandnitratefluxesalongtherootsofPiceaasperata[J].JournalofPlantNutrition,2019,42(7):772-782.
[8]ChenZH,PottosinII,CuinTA,etal.RootplasmamembranetransporterscontrollingK+/Na+homeostasisinsalt-stressedbarley[J].PlantPhysiology,2007,145(4):1714-1725.
[9]HuangYM,ZouYN,WuQS.AlleviationofdroughtstressbymycorrhizasisrelatedtoincreasedrootH2O2effluxintrifoliateorange[J].ScientificReports,2017,7:42335.
[10]HuangLL,LiMJ,ZhouK,etal.UptakeandmetabolismofammoniumandnitrateinresponsetodroughtstressinMalusprunifolia[J].PlantPhysiologyandBiochemistry,2018,127:185-193.
[11]ZhangL,LiGJ,DongGQ,etal.CharacterizationandcomparisonofnitratefluxesinTamarixramosissimaandcottonrootsundersimulateddroughtconditions[J].TreePhysiology,2018,39(4):628-640.
[12]LvH,TengZ,WangS,etal.VoltammetricsimultaneousionfluxmeasurementsplatformforCu2+,Pb2+andHg2+nearricerootsurface:Utilizingcarbonnitrideheterojunctionfilmmodifiedcarbonfibermicroelectrode[J].SensorsandActuatorsB-Chemical,2017,256:98-106.
[13]WuZC,ZhangWJ,XuSJ,etal.Increasingammoniumnutritionasastrategyforinhibitionofcadmiumuptakeandxylemtransportinrice(OryzasativaL.)exposedtocadmiumstress[J].EnvironmentalandExperimentalBotany,2018,155:734-741.
[14]高銀.植物抗逆機制與基因工程研究進(jìn)展[J].內蒙古農業(yè)科技,2007(5):75-78.
[15]楊柳,張振乾,宋繼金,等.植物抗逆基因研究進(jìn)展[J].作物研究,2010,24(2):126-129.
[16]FanYF,WanSM,JiangYS,etal.Over-expressionofaplasmamembraneH+-ATPaseSpAHA1conferredsalttolerancetotransgenicArabidopsis[J].Protoplasma,2018,255(6):1827-1837.
[17]XuY,YuZP,ZhangSZ,etal.CYSTM3negativelyregulatessaltstresstoleranceinArabidopsis[J].PlantMolecularBiology,2019,99(4/5):395-406.
[18]ZhangHL,DengC,YaoJ,etal.PopuluseuphraticaJRLmediatesABAresponse,ionicandROShomeostasisinArabidopsisundersaltstress[J].InternationalJournalofMolecularSciences,2019,20(4):815.
[19]ZhangWW,SongJF,YueS,etal.MhMAPK4fromMalushupehensisRehd.decreasescelldeathintobaccorootsbycontrollingCd2+uptake[J].EcotoxicologyandEnvironmentalSafety,2019,168:230-240.
[20]MaY,DaiXY,XuYY,etal.COLD1conferschillingtoleranceinrice[J].Cell,2015,160(6):1209-1221.[HJ2mm]
[21][JP3]ZhouAM,LiuEH,LiH,etal.PsCor413pm2,aplasmamembrane-localized,cold-regulatedproteinfromPhloxsubulata,conferslowtemperaturetoleranceinArabidopsis[J].InternationalJournalofMolecularSciences,2018,19(9):2579.
[22]LiuY,YuYC,SunJY,etal.Root-zone-specificsensitivityofK+-andCa2+-permeablechannelstoH2O2determinesionhomeostasisinsalinizeddiploidandhexaploidIpomoeatrifida[J].JournalofExperimentalBotany,2019,70(4):1389-1405.
[23]ChenZH,ShabalaS,MendhamNJ,etal.CombiningabilityofsalinitytoleranceonthebasisofNaCl-inducedK+fluxfromrootsofbarley[J].CropScience,2008,48(4):1382-1388.
[24]毛桂蓮,李國旗,許興,等.NaHCO3脅迫下3種灌木Na+、K+、Ca2+的吸收及轉運[J].應用生態(tài)學(xué)報,2014,25(3):718-724.
[25]ZhangXC,WuHC,ChenLM,etal.Mesophyllcellsabilitytomaintainpotassiumiscorrelatedwithdroughttoleranceintea(Camelliasinensis)[J].PlantPhysiologyandBiochemistry,2019,136:196-203.
[26]耶興元.Ca2+與植物抗逆性研究概況[J].信陽(yáng)農林學(xué)院學(xué)報,2008,18(1):124-126.
[27]LangT,DengSR,ZhaoN,etal.Salt-SensitivesignalingnetworksinthemediationofK+/Na+homeostasisgeneexpressioninGlycyrrhizauralensisroots[J].FrontiersinPlantScience,2017,8:1403.
[28]ChaoZ,ShaYH,DingDX,etal.Aspergillusnigerchangesthechemicalformofuraniumtodecreaseitsbiotoxicity,restrictsitsmovementinplantandincreasethegrowthofSyngoniumpodophyllum[J].Chemosphere,2019,224:316-323.
[29]JinZP,WangZQ,MaQX,etal.HydrogensulfidemediatesionfluxesinducingstomatalclosureinresponsetodroughtstressinArabidopsisthaliana[J].PlantandSoil,2017,419(1/2):141-152.
[30]Rodrigo-MorenoA,Andres-ColasN,PoschenriederC,etal.Calcium-andpotassium-permeableplasmamembranetransportersareactivatedbycopperinArabidopsisroottips:linkingcoppertransportwithcytosolichydroxylradicalproduction[J].Plant,CellandEnvironment,2013,36(4):844-855.
[31]黃絹.轉JERF36基因銀中楊的抗旱性評價(jià)及生理機理研究[D].北京:中國林業(yè)科學(xué)研究院,2016.
[32]ChenTX,WangWL,XuK,etal.K+andNa+transportcontributetoK+/Na+homeostasisinPyropiahaitanensisunderhypersalinestress[J].AlgalResearch,2019,40:101526.
[33]郎濤.鹽脅迫下泌鹽與非泌鹽紅樹(shù)離子平衡調控信號網(wǎng)絡(luò )研究[D].北京:北京林業(yè)大學(xué),2014.
[34]張海娜,魯向暉,王瑞峰,等.稀土尾砂干旱脅迫對2種牧草種子萌發(fā)與幼苗生理特性的影響[J].江蘇農業(yè)科學(xué),2019,47(13):204-208.
[35]MakM,BablaM,XuSC,etal.LeafmesophyllK+,H+andCa2+fluxesareinvolvedindrought-induceddecreaseinphotosynthesisandstomatalclosureinsoybean[J].EnvironmentalandExperimentalBotany,2014,98:1-12.
[36]王學(xué)東,周紅菊,華珞.植物對重金屬的抗性機理及其植物修復研究進(jìn)展[J].南水北調與水利科技,2006,4(2):43-46.
[37]MaJ,CaiHM,HeCW,etal.Ahemicellulose-boundformofsiliconinhibitscadmiumionuptakeinrice(Oryzasativa)cells[J].NewPhytologist,2015,206(3):1063-1074.